鼠尾静脉采血的注意事项 鼠尾取血法

血标本采集注意事项： 1. 为减少由于采血时间而造成的检验结果波动，每次采血固定在同一时间； 2. 止血带压迫时间不能太长，过长易引起多种成分改变及血管内溶血； 3. 避免在输液，吃时抽血作为待检样本； 4. 及时送检。

鼠尾静脉采血的注意事项 鼠尾取血法

鼠尾静脉采血的注意事项 鼠尾取血法

尾静脉采血：

此途径大鼠采血量一般为0.05-0.2ml，小鼠为0.05-0.1ml；适用于血糖测定及需求血清量极少的指标检测；采血量少，但是很方便，无需麻醉。

具体步骤：

一个人可以用手电筒或LED小夜灯等紧贴尾静脉，在灯光的照射下，尾静脉会被很清晰的显示，提高。

固定器（自行设计）小鼠，将尾巴拉直，用酒精棉球擦拭尾巴或者用热水或者热毛巾焐热尾巴（热水浸泡鼠尾）, 使尾部静脉扩张。

用左手的食指，中指，无名指及大拇指将小鼠尾巴固定。

握住1ml 注射器（选用29G的针头为宜）前面0.1ml处，右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处斜15°角缓慢进针（鼠尾远端约1/3的位置）。适当增加内压看有无回血，若有回血则缓慢抽取所需血量，棉签按压止血。

请问大鼠断尾取血如何作？

想要用大鼠断尾取血的话可以用温水泡一段时间或者是用取暖灯（那种黄灯泡）烤一段时间再断尾，这样出血量会多一些。不过这种方法是不符合动物的。我这边一般采血量大的话会用到颈静脉采集，这个出血多，也不用麻醉，的缺点是技术难度高。

用量大的话,用摘眼球取血

不行采眼动脉的血吧

眼眶取血对于初学者有点难度的

如果是20ul 血液的话其实不需要剪尾巴的

而且剪尾巴未必可以获得好的效果

你可以试试用一根无菌一下尾尖部

然后就是稍微压迫一下尾部

20ul 应该是没有问题的

因为老鼠的尾部两根静脉在尾尖部汇合

所以此处是取血点

这是一般测血糖常用的方法

你可以试试的

一、静脉血采集方法的注意事项：

1、止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过 40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。

2、采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨空腹采集静脉血，应尽可能避免在输液同时采血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生干扰，特别是血糖和电解质。

3、避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净，避免用力抽吸和推注、避免化学污染和细菌污染引起的溶血。因为红细胞的某些成分与血清(浆)不同，样本溶血可使红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。

4、血样的采集：血样要求在每一天的同一时间采集，理想的时间是早晨 7：00到 8：00，尤其是以监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。一次食物和液体摄入应在前一天下午 6：00 到7：00 (急诊检验例外)。 血样采集应在不服期间，如在早晨服前。血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。

5、标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。当取血不顺利时,切忌在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。

6、采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。7、微量元素测定采集标本的注射器和容器不能含游离金属。

二、临床化学、免疫检验标本 ：临床化学、免疫检验多用非抗凝血标本, 一般用无添加剂(普通采血管-红帽管)。标本采集主要注意事项有：

1、化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采 l管血;

2、采血量视检查项目多少不同而异，通常为3～4ml;

3、多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：血培养→无添加剂管→凝血管→有添加剂管，有添加剂管的顺序为：枸橼酸盐管→肝素管→EDTA管→草酸盐/管;

4、不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本采集后，应尽快送检，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

三、凝血检验标本的采集：一般用枸橼酸钠抗凝(枸橼酸钠抗凝采血管-蓝帽管)。标本采集主要注意事项有：

1、患者应处于平静和空腹状态，避免在输入脂肪乳过程中或其后采血，急诊患者可随时采血检查。

2、抽静脉血1.8mL注入含0.2mL枸橼酸钠溶液(1:9)的抗凝管中，采血后立即上下轻轻颠倒混匀5-8次，采血后应尽快送检。

3、采血人员应技术熟练，一针见血，以防止组织损伤，外源性凝血因子混入，影响实验结果。

4、标本总量应控制在2.0mL±0.2mL，血液与抗凝剂的比例是9:1，当采血量过多或过少时为不合格标本，会影响检验结果。

四、红细胞沉降率(血沉，ESR)检验标本的采集：一般用肝素抗凝(肝素抗凝采血管-绿帽管)。

1、患者应处于平静和空腹状态，避免在输入脂肪乳过程中或其后采血。

2、抽静脉血5.0mL注入肝素抗凝管中，采血后立即上下轻轻颠倒混匀5-8次，采血后应尽快送检。室温中保存不得超过2小时。

3、标本总量应控制在5.0mL±0.2mL, 当采血量过多或过少时为不合格标本，采血过程必须顺利，溶血或有细小凝块的血液标本，均影响血沉结果。

4、微量元素检验标本的采集同血沉一致。

五、血常规(全血细胞分析)检验标本： 一般用EDTA1.5～2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝采血管-紫帽管)。采血注意事项：

1、患者应处于平静状态，住院患者可在起床前采血，门诊患者如匆忙赶到医院，应至少休息15分钟后再采血。避免在输入脂肪乳过程中或其后采血。禁止输液时在输液手臂同侧采集血液。

2、采血后立即上下轻轻颠倒混匀5-8次，使其充分混匀达到抗凝目的，不可用力震荡;

3、应按抗凝管刻度采血至 2ml，标本总量应控制在2.0mL±0.2mL，当采血量过多或过少时为不合格标本，采血过程必须顺利，溶血或有细小凝块的血液标本，均影响血常规结果，采血后应尽快送检(需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过 2 小时WBC形态会发生改变)，不得冷藏。

4、血型与血常规可采1管血。

5、人类白细胞抗原检验标本的采集同血常规一致。

六、葡萄糖耐量试验(OGTT)、胰岛素释放试验、C-肽释放试验 ：一般用无添加剂(普通采血管-红帽管)

1、病人准备：试验前3日，每日进食碳水化合物量不低-300 克，且维持正常活动，影响试验的物(如：、口服避孕、水杨酸盐等)应在3 日前停用，试验前病人应 10～12小时不进食;

2、标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服 75 克葡萄糖，再于给糖后 1、2、3 小时各采血3ml /1次(共4次)。

3、标本保存：采血后1小时内分离血清并及时冷藏送检或采用血糖专用抗凝管采血于 2～8℃保存。

静脉血标本采集注意事项： 空腹抽血，应提前通知病人禁食，避免因进食而影响检验结果。

根据检验目的不同选择标本容器，并计算所需的采血量。

采血后，应回抽注射器活塞，以防血液凝固造成针头阻塞、注射器粘连。

同时抽取几个种类的血标本，应注意注入顺序：一般先将血液注入血培养瓶，再注入抗凝管，注入干燥管，动作应准确迅速。

采集血培养标本，应严格执行无菌作，防止污染；培养液的种类及量应符合要求，瓶塞保持干燥。

血标本严禁在输液、输血的针头处或同侧肢体抽取，应在对侧肢体采集血标本。

正规准确的作需要注意：1.采血本人必须空腹，这样测出来的值才会更加准确；2.采血本人必须在静息情况下采血；3.采血作者必须要严格按照无菌作的步骤进行。

首先做好解释工作 严格无菌作 采集足够的血量 掌握采血时间 及时送检咯

1.血标本作生化检验，应空腹时采取，避免因进食而影响检验结果。

2、严禁在输液、输血的针头处抽取血标本，以名影响检验结果，应在对侧肢体采取

3、要严格执行无菌技术，以防感染。

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血标本采集注意事项：

1. 为减少由于采血时间而造成的检验结果波动，每次采血固定在同一时间；

2. 止血带压迫时间不能太长，过长易引起多种成分改变及血管内溶血；

3. 避免在输液，吃时抽血作为待检样本；

4. 及时送检。

1.血标本作生化检验，应空腹时采取，避免因进食而影响检验结果。

2、严禁在输液、输血的针头处抽取血标本，以名影响检验结果，应在对侧肢体采取

3、要严格执行无菌技术，以防感染。

静脉血标本采集注意事项：

1.

空腹抽血，应提前通知病人禁食，避免因进食而影响检验结果。

2.

根据检验目的不同选择标本容器，并计算所需的采血量。

3.

采血后，应回抽注射器活塞，以防血液凝固造成针头阻塞、注射器粘连。

4.

同时抽取几个种类的血标本，应注意注入顺序：一般先将血液注入血培养瓶，再注入抗凝管，注入干燥管，动作应准确迅速。

5.

采集血培养标本，应严格执行无菌作，防止污染；培养液的种类及量应符合要求，瓶塞保持干燥。

6.

血标本严禁在输液、输血的针头处或同侧肢体抽取，应在对侧肢体采集血标本。